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Cómo el cuerpo siente el frío: Descubren estructura molecular clave

by Editor de Tecnologia marzo 26, 2026
written by Editor de Tecnologia

Cuando sumerges la mano en un cubo de hielo, abres la puerta en un día nevado o sientes el hormigueo de una pasta de dientes con mentol, una proteína en tus células nerviosas llamada TRPM8 entra en acción, abriéndose como una pequeña puerta para enviar una señal de “frío” a tu cerebro.

Ahora, investigadores de la Universidad de California en San Francisco (UCSF) han descubierto cómo TRPM8 cambia su forma al exponerse a temperaturas frías. El estudio, publicado en Nature el 25 de marzo de 2026, podría algún día utilizarse para ayudar a tratar el dolor provocado por el frío. También responde a una pregunta de larga data sobre por qué las aves, que también tienen TRPM8 en sus células nerviosas, son mucho menos sensibles al frío que los mamíferos.

Siempre todos quieren saber cómo funciona la detección de la temperatura, pero resulta ser una cuestión técnicamente muy desafiante de responder. Por lo tanto, finalmente tener una idea de esto es realmente muy emocionante.

David Julius, PhD, Coautor Principal del Estudio y Profesor de la Universidad de California, San Francisco

Julius es el titular de la Cátedra Morris Herzstein en Biología Molecular y Medicina, presidente de Fisiología y receptor del Premio Nobel de Fisiología o Medicina de 2021. Ganó el premio por descubrir TRPV1, que permite a los nervios detectar la capsaicina, el calor picante de los chiles.

Una clave para el descubrimiento del frío fue poder ver las proteínas en movimiento.

«Durante décadas, la biología estructural se ha centrado en capturar proteínas en estados estables y congelados. Este trabajo demuestra que para comprender verdaderamente cómo funciona una proteína, también hay que comprender cómo se mueve», agregó Yifan Cheng, PhD, profesor de bioquímica y biofísica e investigador del Instituto Médico Howard Hughes (HHMI) que codirigió el trabajo.

Una proteína obstinada

Los científicos sabían que TRPM8 solo comienza a activarse cuando las temperaturas bajan de unos 21 grados Celsius (79 grados Fahrenheit) y que era responsable tanto de la sensación de frío como de la sensación refrescante del mentol. Sin embargo, a pesar de años de esfuerzo, los investigadores no habían podido capturar su estructura molecular exacta mientras respondía al frío.

TRPM8 se encuentra normalmente incrustado en la membrana externa de las células nerviosas y tendía a desmoronarse cuando los investigadores lo aislaban. La mayoría de los métodos de imagen también dependen de que las proteínas se bloqueen en una estructura única y estable para visualizarlas, lo que limita la capacidad de los científicos para ver estructuras fluidas e intermedias a medida que una proteína cambia de forma.

Los equipos de Julius y Cheng resolvieron esto al visualizar TRPM8 mientras aún estaba incrustado en membranas tomadas directamente de las células.

«Nos dimos cuenta de que la proteína es particularmente sensible a cómo la manejas. Mantenerla en la membrana nativa fue lo que finalmente nos permitió ver lo que realmente estaba sucediendo», dijo Kevin Choi, estudiante de posgrado de UCSF y coautor principal del estudio.

Mapeando el efecto del frío

Para capturar lo que estaba sucediendo a medida que TRPM8 se abría, el equipo utilizó dos técnicas complementarias: la microscopía crioelectrónica (criomicroscopía), que toma imágenes estáticas, y la espectrometría de masas por intercambio de hidrógeno-deuterio (HDX-MS), que es más dinámica.

Para la criomicroscopía, prepararon muestras de la proteína con frío, con mentol o a temperatura ambiente. Luego, congelaron rápidamente las muestras. Esto bloqueó el canal en su configuración en ese momento. La criomicroscopía luego generó instantáneas tridimensionales de la disposición atómica de la proteína.

Utilizaron HDX-MS para rastrear la proteína en tiempo real a medida que cambiaba la temperatura ambiente. El método destacó qué regiones de la molécula se flexionan y se mueven a medida que cambiaba la temperatura. Juntos, los métodos permitieron a los investigadores modelar exactamente cómo TRPM8 se abría por debajo de los 21 grados Celsius.

«Así como mirar una foto de un caballo no te dice qué tan rápido corre, la microscopía electrónica por sí sola no puede decirnos cómo se mueve la molécula y qué impulsa esos movimientos», dijo la coautora principal Xiaoxuan Lin, científica del HHMI que trabaja en el laboratorio de Cheng en UCSF. «Pero combinar estas dos técnicas nos dio una ventana a lo que estaba sucediendo».

El análisis reveló que el frío estabiliza una región específica del canal TRPM8, lo que luego desencadena el movimiento de una hélice clave. Esto permite que una molécula de lípido separada se deslice en ese lugar, bloqueando el canal abierto y manteniendo la señal de frío. Cuando los investigadores compararon TRPM8 humano con la versión aviar de la proteína, que responde al mentol pero es mucho menos sensible al frío, pudieron detectar qué características son específicamente responsables de detectar el frío.

Una lección para la biología estructural

El nuevo trabajo allana el camino para determinar la estructura de otras proteínas dinámicas que normalmente han sido difíciles de visualizar.

«Las lecciones que aprendimos al estudiar este canal son en realidad muy útiles en general», dijo Cheng. «El comportamiento dinámico es fundamental para la función de muchas proteínas, y no se puede comprender el comportamiento dinámico a partir de una sola instantánea de la estructura de una proteína».

Julius y Cheng ahora están aplicando la misma estrategia para comprender mejor TRPV1, el canal sensor de calor que Julius descubrió en 1997. También planean examinar cómo los compuestos que bloquean TRPM8 (varios de los cuales se encuentran en ensayos clínicos para el dolor) afectan la estructura de la proteína. Eso podría contribuir en última instancia a tratamientos más específicos para afecciones como la alodinia al frío, en la que incluso el frío leve desencadena un dolor intenso.

Fuente:

University of California – San Francisco

Referencia del diario:

Choi, K. Y., et al (2026). Structural energetics of cold sensitivity. Nature. DOI: 10.1038/s41586-026-10276-2. https://www.nature.com/articles/s41586-026-10276-2.

marzo 26, 2026 0 comments
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Tecnología

Cáncer: Alterar la producción de proteínas activa la respuesta inmune

by Editor de Tecnologia marzo 11, 2026
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Un nuevo estudio liderado por el equipo de Pierre Close (GIGA, Laboratorio de Señalización del Cáncer, e Investigador WELRI) revela cómo una alteración sutil en la forma en que los tumores producen sus proteínas puede desencadenar una potente respuesta inmunitaria antitumoral.

Investigadores de la Universidad de Liège y colaboradores internacionales han descubierto una forma inesperada de estimular el sistema inmunitario contra el cáncer: alterando sutilmente la forma en que las células tumorales fabrican sus proteínas.

El estudio, recientemente aceptado para su publicación en Nature Communications, revela que las células cancerosas dependen de un sistema de producción de proteínas altamente preciso para evadir el ataque inmunitario. Cuando este sistema se ve perturbado, los tumores pueden volverse repentinamente vulnerables al reconocimiento y la eliminación por las propias defensas del organismo.

Cuando el control de calidad de las proteínas se convierte en el escudo del cáncer

Todas las células producen constantemente proteínas basándose en instrucciones genéticas. Para hacerlo con precisión, dependen de «adaptadores» moleculares llamados ARN de transferencia (ARNt), que aseguran que las proteínas se construyan correctamente. Las células cancerosas explotan este sistema para mantener la estabilidad y evitar desencadenar respuestas inmunitarias.

El equipo de investigación descubrió que una modificación específica del ARNt, controlada por una enzima llamada KEOPS, juega un papel crucial en ayudar a los tumores de melanoma a evadir la detección inmunitaria. Cuando esta modificación se interrumpe, las células cancerosas comienzan a producir proteínas mal plegadas que se acumulan dentro de la célula.

«Al interrumpir este mecanismo de control de calidad, obligamos al tumor a revelar lo que normalmente trabaja duro para ocultar,» explica Pierre Close, Director del Laboratorio de Señalización del Cáncer. «Esta acumulación de proteínas defectuosas actúa como una señal de advertencia: desencadena una respuesta inmunitaria similar a la que se activa durante las infecciones virales. Es una forma completamente nueva de activar la inmunidad antitumoral.»

Esta acumulación, lejos de ser inofensiva, actúa como una señal de socorro: activa un sensor inmunitario innato normalmente utilizado para detectar infecciones virales. Esto, a su vez, atrae y activa las células inmunitarias T, que se infiltran en el tumor y provocan su rechazo.

En modelos preclínicos, bloquear esta vía transformó los tumores «fríos», típicamente insensibles al ataque inmunitario, en tumores «calientes» que se infiltraron con células inmunitarias y mostraron una reducción notable del crecimiento.

Una nueva estrategia para hacer que los tumores resistentes sean tratables

Las inmunoterapias han revolucionado el tratamiento del cáncer, pero muchos tumores siguen siendo resistentes porque evaden el ataque inmunitario eficaz. Este estudio destaca un enfoque fundamentalmente nuevo: en lugar de estimular directamente las células inmunitarias, los investigadores pueden hacer que las células tumorales sean más susceptibles a la inmunidad antitumoral alterando la forma en que producen proteínas.

«Nuestro trabajo demuestra que la estabilidad de la producción de proteínas puede convertirse en un verdadero talón de Aquiles para los tumores,» afirma Cléa Dziagwa, candidata a doctorado Télévie y primera autora de la publicación. «Comprender cómo los ARNt influyen en la evasión inmunitaria abre la posibilidad de intervenir donde las inmunoterapias convencionales fallan.»

Al vincular la biología del ARN, el control de calidad de las proteínas y la inmunidad antitumoral, el trabajo abre nuevas vías para el desarrollo terapéutico. Dirigirse a las modificaciones del ARNt podría representar una estrategia para mejorar las inmunoterapias actuales o para tratar los cánceres que actualmente no responden.

Del descubrimiento fundamental a la ambición traslacional

Este trabajo se llevó a cabo en el GIGA Institute de la Universidad de Liège, en colaboración con socios internacionales en el Reino Unido y Alemania, y contó con el apoyo de FNRS y WELRI/WELBIO. Refleja la creciente fortaleza de la investigación belga en biología del ARN e inmunología del cáncer.

Para los científicos clínicos involucrados en el proyecto, los hallazgos también dan forma a futuras ambiciones: traducir los descubrimientos sobre el ARN y la síntesis de proteínas en nuevas estrategias terapéuticas para los cánceres difíciles de tratar. Al comprender cómo los tumores controlan su maquinaria interna de proteínas para escapar de la detección inmunitaria, los investigadores esperan diseñar intervenciones que vuelvan a involucrar al sistema inmunitario y mejoren los resultados de los pacientes.

En última instancia, este estudio subraya una idea central: a veces, hacer que el cáncer sea vulnerable no consiste en atacarlo directamente, sino en revelarlo al sistema inmunitario.

Source:

Journal reference:

Dziagwa, C., et al. (2026). Disruption of tRNA threonylation triggers RIG-I mediated anti-tumour immune response. Nature Communications. DOI: 10.1038/s41467-026-69964-2. https://www.nature.com/articles/s41467-026-69964-2

marzo 11, 2026 0 comments
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Tecnología

Proteínas LGP2 y MDA5: Clave en la Defensa Antiviral

by Editor de Tecnologia febrero 28, 2026
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Un estudio reciente revela cómo dos proteínas colaboran en una etapa clave de la detección antiviral, según investigadores de Science Tokyo. Utilizando criomicroscopía electrónica y microscopía de fuerza atómica de alta velocidad, descubrieron que LGP2 se une al ARN viral y recluta moléculas de MDA5, como si ensartara cuentas en un hilo. Esto crea un andamio que facilita la formación de un gran complejo de señalización, que finalmente desencadena una respuesta inmunitaria innata.

El sistema inmunitario innato actúa como la primera línea de defensa del organismo contra las infecciones virales. Cuando los virus entran en las células, a menudo producen ácido ribonucleico de doble cadena (ARNdc) como parte de su proceso de replicación. Receptores inmunitarios especializados presentes en el citoplasma de la célula buscan constantemente ARNdc como señal de infección. Uno de estos receptores, la proteína 5 asociada a la diferenciación del melanoma (MDA5), desempeña un papel central al reconocer el ARNdc viral y formar estructuras similares a filamentos a lo largo de él. Una vez que se ensamblan suficientes moléculas de MDA5, desencadenan una cascada de señalización que finalmente conduce a la producción de compuestos antivirales.

Otra proteína importante en este proceso es el laboratorio de genética y fisiología 2 (LGP2). LGP2 se une al ARN viral y se mueve a lo largo de él a través de un proceso dependiente de la energía conocido como translocación. Aunque LGP2 no puede enviar señales antivirales directamente por sí solo, los científicos saben desde hace tiempo que LGP2 y MDA5 cooperan para detectar infecciones virales. Sin embargo, exactamente cómo LGP2 reconoce el ARN viral y ayuda a MDA5 no estaba claro.

Para abordar esta cuestión, un equipo de investigación dirigido por el Profesor Asociado Kazuki Kato (contrato temporal) de la Unidad de Investigación de Inmunología Mecanística, Instituto de Investigación Integrada, Instituto de Ciencia de Tokio (Science Tokyo), Japón, junto con el Profesor Osamu Nureki y la estudiante de posgrado Nina Kurihara (en el momento del estudio) del Departamento de Ciencias Biológicas, Escuela de Ciencias, Universidad de Tokio, Japón, investigó los detalles de esta asociación molecular. Utilizando una combinación de experimentos bioquímicos y técnicas avanzadas de imagen, el equipo examinó cómo LGP2 y MDA5 interactúan con el ARN viral y entre sí. Sus hallazgos estuvieron disponibles en línea el 19 de enero de 2026 y se publicaron en el Volumen 86, Número 4 de la revista Molecular Cell el 19 de febrero de 2026.

Los investigadores demostraron primero que LGP2 es especialmente importante cuando las moléculas de ARN viral son relativamente cortas. Por sí solo, MDA5 responde mejor a las hebras largas de ARNdc. Sin embargo, cuando LGP2 estaba presente, MDA5 podía formar filamentos cortos de manera eficiente incluso en moléculas de ARN más cortas, activando la señalización antiviral descendente.

Para comprender cómo sucede esto a nivel molecular, el equipo utilizó criomicroscopía electrónica para sondear la estructura de las proteínas y microscopía de fuerza atómica de alta velocidad para visualizarlas en acción. Descubrieron que LGP2 primero se une a los extremos de una molécula de ARNdc. Luego, utiliza energía del ATP para moverse a lo largo de la hebra de ARN. A medida que avanza, LGP2 funciona como un andamio, reclutando moléculas de MDA5 detrás de él y ayudándolas a ensamblarse en estructuras de filamentos estables. Los investigadores establecieron una analogía con el ensartado de cuentas en un hilo: el hilo representa el ARNdc, mientras que LGP2 actúa como la cuenta líder de un grupo de cuentas de MDA5.

El equipo también descubrió que LGP2 promueve en última instancia la formación de pequeños cúmulos de filamentos de MDA5. Estos cúmulos mejoran la activación de la señalización antiviral mitocondrial (MAVS), una proteína de señalización clave que amplifica las respuestas antivirales dentro de las células. «Nuestro estudio aclara los mecanismos precisos por los cuales LGP2 reconoce el ARN viral y coopera con MDA5 para activar las respuestas inmunitarias», afirma Kato.

Al aclarar cómo LGP2 y MDA5 trabajan juntos, este estudio proporciona una imagen detallada de una etapa temprana clave en la defensa antiviral. Este conocimiento podría guiar futuros esfuerzos para ajustar las respuestas inmunitarias en terapias antivirales y tecnologías médicas basadas en ARN, como concluye Kato: «Estos hallazgos profundizan nuestra comprensión del reconocimiento del ARN viral y se espera que contribuyan al diseño de vacunas de ARNm más seguras y eficaces».

 

Fuente:

Instituto de Ciencia de Tokio

Referencia del diario:

DOI: 10.1016/j.molcel.2025.12.019

febrero 28, 2026 0 comments
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Tecnología

Microscopía Electrónica Multicolor: Visualización Celular a Nanoescala

by Editor de Tecnologia febrero 22, 2026
written by Editor de Tecnologia

Científicos han desarrollado una nueva técnica de imagen que utiliza un novedoso mecanismo de contraste en bioimagen para combinar las fortalezas de dos potentes métodos de microscopía, permitiendo a los investigadores observar tanto la intrincada arquitectura de las células como la ubicación específica de las proteínas, todo en colores vivos y con una resolución nanométrica.

Este avance, denominado microscopía electrónica multicolor, aborda un desafío de larga data en la imagenología biológica: tradicionalmente, los científicos debían elegir entre visualizar detalles estructurales finos o rastrear moléculas específicas, pero no ambos a la vez.

Este enfoque abre las puertas al estudio de todo, desde la señalización celular hasta la organización de grupos moleculares dentro de las células, al tiempo que se observa con precisión dónde ocurren estos procesos dentro de la arquitectura celular. La investigación se presentará en la 70ª Reunión Anual de la Sociedad de Biofísica en San Francisco, del 21 al 25 de febrero de 2026.

Siempre me ha fascinado desarrollar nuevas técnicas de microscopía que puedan visualizar cosas que nunca antes habíamos visto. Estamos construyendo un microscopio electrónico multicolor, una técnica que combina los beneficios de la microscopía electrónica y la microscopía de fluorescencia.

Debsankar Saha Roy, investigador postdoctoral en el laboratorio de Maxim Prigozhin en la Universidad de Harvard

La microscopía de fluorescencia tradicional funciona adhiriendo etiquetas brillantes a las proteínas de interés y luego iluminando la muestra con luz visible para que esas etiquetas se iluminen. Este enfoque es excelente para localizar moléculas específicas, pero tiene limitaciones significativas. «La resolución se limita a unos 250 a 300 nanómetros, por lo que no se pueden ver las proteínas individuales con claridad», explicó Roy. «Pero el problema mayor es que no se ve la estructura de la célula. Se ve lo que está etiquetado, pero no todo lo demás a su alrededor».

Por otro lado, la microscopía electrónica puede revelar estructuras celulares con un detalle exquisito, hasta unos pocos nanómetros, pero tradicionalmente no ha podido identificar moléculas específicas a color. Los científicos han intentado combinar ambos enfoques tomando imágenes separadas con cada método y luego superponiéndolas, pero alinear las imágenes con precisión, especialmente en muestras grandes como el tejido cerebral, ha demostrado ser extremadamente difícil.

La solución del equipo de Harvard es elegante: en lugar de utilizar dos sesiones de imagen separadas, utilizan un único haz de electrones para realizar ambas tareas simultáneamente.

«No estamos enviando luz, estamos enviando un haz de electrones», dijo Roy. «Tenemos sondas que se pueden adherir a una proteína que emiten luz visible cuando son excitadas por electrones. Este proceso se llama catodoluminiscencia. Por lo tanto, del mismo haz de electrones, se obtienen dos conjuntos de información: la señal de color de las sondas y también la imagen estructural detallada de los electrones».

Una ventaja clave de la técnica es que los investigadores pueden utilizar tintes fluorescentes existentes que ya están ampliamente disponibles y bien caracterizados. El equipo había desarrollado previamente nanopartículas de lantánidos como sondas para la microscopía electrónica multicolor y trabajaba en adherirlas a las proteínas.

Más recientemente, el equipo hizo un descubrimiento sorprendente al colocar algunos tintes fluorescentes comunes en el microscopio electrónico. «Lo más sorprendente que observamos fue que los tintes estándar utilizados en la microscopía de fluorescencia también emiten luz visible cuando se excitan con electrones», dijo Roy. «Eso nunca antes se había visto. Y estos tintes, y sus métodos de etiquetado de proteínas, ya están desarrollados y disponibles; no tienes que crear nada nuevo».

El equipo ya ha demostrado que la técnica funciona en células de mamíferos y tejidos biológicos, incluidos moscas infectadas por hongos.

De cara al futuro, los investigadores tienen como objetivo extender la técnica a tres dimensiones. Actualmente, el método produce imágenes planas bidimensionales. La próxima frontera es adaptarla para su uso con microscopía electrónica criogénica, una técnica en la que las muestras se congelan rápidamente, preservando las células en su estado natural y permitiendo a los científicos visualizarlas desde múltiples ángulos para construir reconstrucciones 3D.

«Queremos extender este enfoque de microscopía electrónica multicolor a 3D», dijo Roy. «Para lograrlo, nuestro objetivo es implementar esta técnica en secciones ultrafinas de matrices celulares incrustadas y/o en microscopía electrónica criogénica, ese es el siguiente paso».

febrero 22, 2026 0 comments
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