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Opción 1 (más corta):

Cerebro Transparente: Nueva Técnica para Visualizar Neuronas en Vivo

Opción 2:

SeeDB-Live: Visualización Profunda y en Vivo del Cerebro

Opción 3:

Nueva Técnica Permite Ver el Cerebro en Vivo y Transparente

Opción 4:

Visualización Cerebral en Vivo: Avance con SeeDB-Live

by Editora de Salud marzo 13, 2026
written by Editora de Salud

¿Hacer transparente un cerebro vivo y observar la actividad de sus neuronas sin alterar su función? Suena a ciencia ficción, pero la solución podría estar ya dentro de nuestros propios cuerpos.

En un estudio publicado en Nature Methods el 12 de marzo de 2026, un equipo de investigación liderado por la Universidad de Kyushu presenta un nuevo reactivo llamado SeeDB-Live. Este utiliza albúmina, una proteína común en el suero sanguíneo, para aclarar el tejido preservando la función celular. La técnica permite a los científicos observar estructuras más profundas y brillantes tanto en cortes de cerebro en el laboratorio como en ratones vivos, alcanzando la actividad neuronal que antes era invisible.

“Esta es la primera vez que se logra la aclaración de tejidos sin alterar su biología.”

Takeshi Imai, Autor Senior del Estudio y Profesor, Facultad de Ciencias Médicas, Universidad de Kyushu

“SeeDB-Live puede allanar el camino para la imagenología de tejidos profundos en vivo, tanto ex vivo como in vivo”, añadió Shigenori Inagaki, primer autor del estudio y profesor asistente de la misma facultad.

¿Cómo ver más profundo en el cerebro vivo?

Funciones complejas como la memoria y el pensamiento surgen de la comunicación en tiempo real entre células en las profundidades del cerebro. Aunque los cortes preservan cierta actividad, comprender la dinámica cerebral normal requiere la imagenología del cerebro vivo.

Hacer transparente el cerebro opaco es una solución, y comienza con la óptica.

Considere las canicas de vidrio: claramente visibles en el aire, pero casi desaparecen en el aceite. Esto se debe a que la luz se refracta y dispersa al pasar entre materiales con diferentes índices de refracción, y el tejido cerebral se comporta de la misma manera. Los lípidos y otros componentes celulares crean pequeñas discrepancias, dispersando la luz y ocultando estructuras más profundas. Reducirlos permite que la luz viaje de manera uniforme.

A través de experimentos sistemáticos, el equipo de Imai descubrió que las células vivas se vuelven más transparentes cuando el índice de refracción de la solución extracelular se ajusta a 1.36–1.37.

Con un objetivo preciso en mente, el equipo necesitaba una forma no tóxica de alcanzarlo manteniendo al mismo tiempo el equilibrio osmótico, para que las células no se hincharan ni se encogieran. Anteriormente, habían probado sustancias naturales como el azúcar, pero estas requerían altas concentraciones que aumentaban la presión osmótica y deshidrataban las células.

Dado que la presión osmótica depende del número de moléculas, el equipo recurrió a polímeros esféricos grandes. Su mayor tamaño significa que se requieren menos para elevar el índice de refracción, lo que ajusta el rendimiento óptico sin abrumar a las células. Sin embargo, a pesar de analizar casi 100 compuestos, la respuesta no llegaba.

Una proteína sanguínea es la clave sorprendente para la transparencia cerebral

El punto de inflexión llegó inesperadamente.

Una noche, Inagaki regresó a una idea simple: las proteínas son polímeros. Tomó una botella de albúmina sérica bovina (BSA), un reactivo de laboratorio común derivado de la sangre, que, para su sorpresa, mostró la presión osmótica más baja en el índice de refracción deseado.

“Lo probé tres o cuatro veces antes de creerlo”, recordó Inagaki. Solo en el laboratorio esa noche, dejó escapar un grito de emoción. “De todas las cosas, nunca esperábamos que llegara a esto”.

Al agregar albúmina al medio de cultivo para igualar el índice de refracción dentro de las células, el equipo desarrolló una solución de aclaración de tejido vivo, que llamaron SeeDB-Live.

“Durante el desarrollo de SeeDB-Live, descubrimos que las neuronas son extremadamente sensibles a las concentraciones de iones, y nos costó un gran esfuerzo obtener la formulación correcta. Gracias a esa afortunada noche solo en el laboratorio, me ayudé con una BSA de alta pureza y costosa que normalmente no me atrevería a usar”, añade Inagaki con una risa.

SeeDB-Live hace que los cortes de cerebro de ratón sean transparentes en una hora después de la inmersión. Cuando se combina con un indicador de calcio, la actividad neuronal normal en las profundidades del tejido se iluminó en el corte cerebral transparente. Cuando se aplicó a cerebros de ratón vivos, las señales de fluorescencia de las neuronas profundas se volvieron tres veces más brillantes.

Esto abre vistas claras de la capa 5 de la corteza cerebral, donde las neuronas ricamente ramificadas ayudan a revelar cómo el cerebro procesa la información y traduce la actividad neuronal en acción. Antes de SeeDB-Live, era difícil obtener imágenes nítidas a esta profundidad con estrategias convencionales.

Además, dado que el fluido extracelular elimina SeeDB-Live en cuestión de horas, la transparencia del tejido vuelve a su estado original. Debido a que el método no causa cambios permanentes, se puede volver a imagenar al mismo ratón repetidamente para rastrear la actividad cerebral a lo largo del tiempo.

“La albúmina es abundante en la sangre y altamente soluble, lo que la hace adecuada para la aclaración”, señala Imai. “Fue un descubrimiento accidental, pero mirando hacia atrás, se siente casi natural. Lo que la evolución ha moldeado a lo largo de millones de años es realmente impresionante”.

Una década después de decir “imposible”

SeeDB-Live demuestra la primera aclaración óptica no invasiva que aumenta significativamente la profundidad de la imagenología y permite la observación de la dinámica de todo el tejido.

Los investigadores esperan que mejore la imagenología de fluorescencia profunda para comprender las funciones integrativas del cerebro. También puede ayudar a evaluar tejidos 3D y organoides cerebrales para la investigación del descubrimiento de fármacos.

El equipo señala que, aunque SeeDB-Live funciona bien para el tejido cerebral, las barreras biológicas limitan la administración a otros órganos y el acceso al cerebro aún requiere una ventana quirúrgica que puede causar estrés y reducir la eficiencia.

“Siento que aún no hemos materializado completamente su potencial”, dice Inagaki, y añade que los esfuerzos futuros se centrarán en métodos de administración menos invasivos para mejorar la penetración para una imagenología más profunda y un mejor análisis funcional de la actividad cerebral.

Para Imai, este logro marca la culminación de más de una década de trabajo. Después de desarrollar SeeDB en 2013 y SeeDB2 en 2016 para tejido fijo, se le preguntó repetidamente si era posible la aclaración de tejido vivo.

“Esa pregunta me llegó unas cien veces, y cada vez respondía ‘imposible’”, reflexiona Imai. “Pero diez años después, aquí estamos. Cuando algo parece inalcanzable, si sigues pensando en ello, eventualmente puedes encontrar una manera”.

Fuente:

Referencia del diario:

Inagaki, S., et al. (2026). Isotonic and minimally invasive optical clearing media for live cell imaging ex vivo and in vivo. Nature Methods. DOI: 10.1038/s41592-026-03023-y. https://www.nature.com/articles/s41592-026-03023-y.

marzo 13, 2026 0 comments
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Tecnología

PROTACs: El Universo Molecular de una Investigadora

by Editor de Tecnologia marzo 6, 2026
written by Editor de Tecnologia

“Parece un pequeño sistema solar. Pero en lugar de planetas, es una instantánea de mi viaje de investigación en el laboratorio”, afirma Sadiya Tanga, estudiante de química de la Universidad Ashoka. El trabajo de Tanga se ha centrado en un tipo de molécula de fármaco llamada quimeras de direccionamiento de proteólisis, o PROTAC, por sus siglas en inglés. Las PROTAC tienen dos extremos activos, uno que captura una proteína objetivo y otro que captura una bandera molecular que le indica a la célula que descomponga todo el conjunto como residuo. “Cada matraz y esfera brillante contiene un compuesto diferente que me costó mucho diseñar y sintetizar”, dice Tanga. “Los colores que ves provienen de partes de las moléculas que brillan bajo la luz UV”.

Enviado por Sadiya Tanga

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Chemical &amp. Engineering News ISSN 0009-2347 Copyright © 2026 American Chemical Society

marzo 6, 2026 0 comments
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Tecnología

Microscopía Electrónica Multicolor: Visualización Celular a Nanoescala

by Editor de Tecnologia febrero 22, 2026
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Científicos han desarrollado una nueva técnica de imagen que utiliza un novedoso mecanismo de contraste en bioimagen para combinar las fortalezas de dos potentes métodos de microscopía, permitiendo a los investigadores observar tanto la intrincada arquitectura de las células como la ubicación específica de las proteínas, todo en colores vivos y con una resolución nanométrica.

Este avance, denominado microscopía electrónica multicolor, aborda un desafío de larga data en la imagenología biológica: tradicionalmente, los científicos debían elegir entre visualizar detalles estructurales finos o rastrear moléculas específicas, pero no ambos a la vez.

Este enfoque abre las puertas al estudio de todo, desde la señalización celular hasta la organización de grupos moleculares dentro de las células, al tiempo que se observa con precisión dónde ocurren estos procesos dentro de la arquitectura celular. La investigación se presentará en la 70ª Reunión Anual de la Sociedad de Biofísica en San Francisco, del 21 al 25 de febrero de 2026.

Siempre me ha fascinado desarrollar nuevas técnicas de microscopía que puedan visualizar cosas que nunca antes habíamos visto. Estamos construyendo un microscopio electrónico multicolor, una técnica que combina los beneficios de la microscopía electrónica y la microscopía de fluorescencia.

Debsankar Saha Roy, investigador postdoctoral en el laboratorio de Maxim Prigozhin en la Universidad de Harvard

La microscopía de fluorescencia tradicional funciona adhiriendo etiquetas brillantes a las proteínas de interés y luego iluminando la muestra con luz visible para que esas etiquetas se iluminen. Este enfoque es excelente para localizar moléculas específicas, pero tiene limitaciones significativas. «La resolución se limita a unos 250 a 300 nanómetros, por lo que no se pueden ver las proteínas individuales con claridad», explicó Roy. «Pero el problema mayor es que no se ve la estructura de la célula. Se ve lo que está etiquetado, pero no todo lo demás a su alrededor».

Por otro lado, la microscopía electrónica puede revelar estructuras celulares con un detalle exquisito, hasta unos pocos nanómetros, pero tradicionalmente no ha podido identificar moléculas específicas a color. Los científicos han intentado combinar ambos enfoques tomando imágenes separadas con cada método y luego superponiéndolas, pero alinear las imágenes con precisión, especialmente en muestras grandes como el tejido cerebral, ha demostrado ser extremadamente difícil.

La solución del equipo de Harvard es elegante: en lugar de utilizar dos sesiones de imagen separadas, utilizan un único haz de electrones para realizar ambas tareas simultáneamente.

«No estamos enviando luz, estamos enviando un haz de electrones», dijo Roy. «Tenemos sondas que se pueden adherir a una proteína que emiten luz visible cuando son excitadas por electrones. Este proceso se llama catodoluminiscencia. Por lo tanto, del mismo haz de electrones, se obtienen dos conjuntos de información: la señal de color de las sondas y también la imagen estructural detallada de los electrones».

Una ventaja clave de la técnica es que los investigadores pueden utilizar tintes fluorescentes existentes que ya están ampliamente disponibles y bien caracterizados. El equipo había desarrollado previamente nanopartículas de lantánidos como sondas para la microscopía electrónica multicolor y trabajaba en adherirlas a las proteínas.

Más recientemente, el equipo hizo un descubrimiento sorprendente al colocar algunos tintes fluorescentes comunes en el microscopio electrónico. «Lo más sorprendente que observamos fue que los tintes estándar utilizados en la microscopía de fluorescencia también emiten luz visible cuando se excitan con electrones», dijo Roy. «Eso nunca antes se había visto. Y estos tintes, y sus métodos de etiquetado de proteínas, ya están desarrollados y disponibles; no tienes que crear nada nuevo».

El equipo ya ha demostrado que la técnica funciona en células de mamíferos y tejidos biológicos, incluidos moscas infectadas por hongos.

De cara al futuro, los investigadores tienen como objetivo extender la técnica a tres dimensiones. Actualmente, el método produce imágenes planas bidimensionales. La próxima frontera es adaptarla para su uso con microscopía electrónica criogénica, una técnica en la que las muestras se congelan rápidamente, preservando las células en su estado natural y permitiendo a los científicos visualizarlas desde múltiples ángulos para construir reconstrucciones 3D.

«Queremos extender este enfoque de microscopía electrónica multicolor a 3D», dijo Roy. «Para lograrlo, nuestro objetivo es implementar esta técnica en secciones ultrafinas de matrices celulares incrustadas y/o en microscopía electrónica criogénica, ese es el siguiente paso».

febrero 22, 2026 0 comments
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Tecnología

Bioluminiscencia: Nueva herramienta para visualizar la actividad cerebral.

by Editor de Tecnologia diciembre 13, 2025
written by Editor de Tecnologia

Hace una década, un grupo de científicos tuvo la brillante idea de utilizar la bioluminiscencia para visualizar la actividad cerebral.

«Empezamos a pensar: ‘¿Qué pasaría si pudiéramos iluminar el cerebro desde dentro?'», explicó Christopher Moore, profesor de neurociencia en la Universidad de Brown. «Iluminar el cerebro se utiliza para medir la actividad – usualmente a través de un proceso llamado fluorescencia – o para estimular la actividad en las células para probar su función. Pero el uso de láseres en el cerebro tiene desventajas en los experimentos, a menudo requiriendo hardware sofisticado y una menor tasa de éxito. Pensamos que podríamos usar la bioluminiscencia en su lugar.»

Con una importante subvención de la National Science Foundation, el Bioluminescence Hub en el Carney Institute for Brain Science de Brown se lanzó en 2017, basado en colaboraciones entre Moore (codirector del Carney Institute), Diane Lipscombe (directora del instituto), Ute Hochgeschwender (de Central Michigan University) y Nathan Shaner (de la Universidad de California en San Diego).

El objetivo de los científicos era desarrollar y difundir herramientas de neurociencia basadas en dar a las células del sistema nervioso la capacidad de producir y responder a la luz.

En un estudio publicado en Nature Methods, el equipo describió una herramienta de bioluminiscencia que desarrolló recientemente. Llamada Ca2+ BioLuminescence Activity Monitor – o «CaBLAM», en resumen – la herramienta captura la actividad a nivel de célula única y subcelular a alta velocidad y funciona bien en ratones y peces cebra, permitiendo grabaciones de varias horas y eliminando la necesidad de luz externa.

Moore señaló que Shaner, profesor asociado de neurociencia y farmacología en la U.C. San Diego, lideró el desarrollo del dispositivo molecular que se convirtió en CaBLAM: «CaBLAM es una molécula realmente asombrosa que Nathan creó», dijo Moore. «Está a la altura de su nombre.»

Medir la actividad continua de las células cerebrales vivas es esencial para comprender las funciones de los organismos biológicos, según Moore. El enfoque actual más común utiliza imágenes con indicadores de calcio codificados genéticamente basados en la fluorescencia.

«En la forma en que funciona la fluorescencia, se iluminan haces de luz sobre algo, y se obtiene una longitud de onda diferente de haces de luz a cambio», explicó Moore, quien lidera el Bioluminescence Hub. «Se puede hacer que este proceso sea sensible al calcio para obtener proteínas que reflejen una cantidad diferente o un color diferente de luz, dependiendo de si el calcio está presente o no, con una señal brillante.»

Si bien las sondas fluorescentes son útiles en muchos contextos, dijo, existen limitaciones significativas para usarlas en el monitoreo de la actividad cerebral. Primero, bombardear el cerebro con grandes cantidades de luz externa durante un período prolongado puede dañar las células. Segundo, la iluminación de alta intensidad puede hacer que la molécula involucrada en la fluorescencia cambie su estructura para que ya no pueda emitir suficiente luz; esto se llama fotoblanqueo y limita el tiempo que se puede usar la fluorescencia. Finalmente, iluminar el cerebro implica hardware, como láseres y fibras, que requieren un enfoque más invasivo.

En contraste, la producción de luz bioluminiscente, donde la luz se produce cuando una enzima descompone una molécula pequeña específica, tiene varias ventajas. Debido a que las sondas de bioluminiscencia no involucran luz externa brillante, no existe riesgo de fotoblanqueo y tampoco tienen un efecto fototóxico, por lo que son más seguras para la salud cerebral.

La luz también facilita la visualización.

«El tejido cerebral ya brilla débilmente por sí solo cuando es golpeado por la luz externa, creando ruido de fondo», dijo Shaner. «Además, el tejido cerebral dispersa la luz, borrando tanto la luz que entra como la señal que regresa. Esto hace que las imágenes sean más tenues, más borrosas y más difíciles de ver en lo profundo del cerebro. El cerebro no produce bioluminiscencia de forma natural, por lo que cuando las neuronas diseñadas genéticamente brillan por sí solas, destacan sobre un fondo oscuro con casi ninguna interferencia. Y con la bioluminiscencia, las células cerebrales actúan como sus propios faros: solo tienes que observar la luz que sale, lo cual es mucho más fácil de ver incluso cuando se dispersa a través del tejido.»

La idea de medir la actividad cerebral con bioluminiscencia ha existido durante décadas, dijo Moore, pero nadie había logrado hacer que la luz bioluminiscente fuera lo suficientemente brillante como para permitir imágenes detalladas de la actividad de las células cerebrales, hasta ahora.

Los conocimientos que encendieron CaBLAM

«El artículo actual es emocionante por muchas razones», dijo Moore. «Estas nuevas moléculas han proporcionado, por primera vez, la capacidad de ver células individuales activadas de forma independiente, casi como si estuvieras usando una cámara de cine muy especial y sensible para grabar la actividad cerebral mientras está sucediendo.»

La nueva herramienta puede capturar el comportamiento de una sola neurona en un animal de laboratorio vivo, incluso hasta la actividad dentro de subcompartimentos de las células. En el estudio, el equipo mostró datos de una sesión de grabación que duró cinco horas continuas, lo que habría sido imposible utilizando el método de fluorescencia limitado en el tiempo.

«Para estudiar el comportamiento complejo o el aprendizaje, la bioluminiscencia permite capturar todo el proceso, con menos hardware involucrado», dijo Moore.

Este trabajo forma parte de un esfuerzo más amplio del centro para crear nuevas formas de controlar y observar la actividad cerebral. Un proyecto utiliza una célula viva para enviar una ráfaga de luz que es detectada por una célula vecina, permitiendo efectivamente que las neuronas se comuniquen a través de la luz (lo que Moore llama «reconectar el cerebro con luz»). El equipo también está diseñando nuevos métodos que utilizan el calcio para controlar la actividad celular. A medida que estas ideas tomaron forma, quedó claro que todas ellas dependían de sensores de calcio más brillantes y mejores. Ese se ha convertido en un enfoque clave, dijo Moore.

«Nos aseguramos de que, como centro que intenta impulsar el campo, creáramos las piezas componentes necesarias», dijo Moore.

Moore espera que CaBLAM pueda eventualmente usarse para estudiar áreas del cuerpo más allá del cerebro.

«Este avance permite una gama completamente nueva de opciones para ver cómo funcionan el cerebro y el cuerpo», dijo Moore, «incluyendo el seguimiento de la actividad en múltiples partes del cuerpo a la vez.»

Añadió que la herramienta es un testimonio del poder de la ciencia en equipo. Al menos 34 investigadores contribuyeron al proyecto de los socios del Bioluminescence Hub, incluyendo Brown, Central Michigan University, U.C. San Diego, la Universidad de California en Los Ángeles y la Universidad de Nueva York. La financiación para la investigación provino de los National Institutes of Health, la National Science Foundation y la Paul G. Allen Family Foundation.

Source:

Journal reference:

DOI: 10.1038/s41592-025-02972-0

diciembre 13, 2025 0 comments
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