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Cómo el cuerpo siente el frío: Descubren estructura molecular clave

by Editor de Tecnologia marzo 26, 2026
written by Editor de Tecnologia

Cuando sumerges la mano en un cubo de hielo, abres la puerta en un día nevado o sientes el hormigueo de una pasta de dientes con mentol, una proteína en tus células nerviosas llamada TRPM8 entra en acción, abriéndose como una pequeña puerta para enviar una señal de “frío” a tu cerebro.

Ahora, investigadores de la Universidad de California en San Francisco (UCSF) han descubierto cómo TRPM8 cambia su forma al exponerse a temperaturas frías. El estudio, publicado en Nature el 25 de marzo de 2026, podría algún día utilizarse para ayudar a tratar el dolor provocado por el frío. También responde a una pregunta de larga data sobre por qué las aves, que también tienen TRPM8 en sus células nerviosas, son mucho menos sensibles al frío que los mamíferos.

Siempre todos quieren saber cómo funciona la detección de la temperatura, pero resulta ser una cuestión técnicamente muy desafiante de responder. Por lo tanto, finalmente tener una idea de esto es realmente muy emocionante.

David Julius, PhD, Coautor Principal del Estudio y Profesor de la Universidad de California, San Francisco

Julius es el titular de la Cátedra Morris Herzstein en Biología Molecular y Medicina, presidente de Fisiología y receptor del Premio Nobel de Fisiología o Medicina de 2021. Ganó el premio por descubrir TRPV1, que permite a los nervios detectar la capsaicina, el calor picante de los chiles.

Una clave para el descubrimiento del frío fue poder ver las proteínas en movimiento.

«Durante décadas, la biología estructural se ha centrado en capturar proteínas en estados estables y congelados. Este trabajo demuestra que para comprender verdaderamente cómo funciona una proteína, también hay que comprender cómo se mueve», agregó Yifan Cheng, PhD, profesor de bioquímica y biofísica e investigador del Instituto Médico Howard Hughes (HHMI) que codirigió el trabajo.

Una proteína obstinada

Los científicos sabían que TRPM8 solo comienza a activarse cuando las temperaturas bajan de unos 21 grados Celsius (79 grados Fahrenheit) y que era responsable tanto de la sensación de frío como de la sensación refrescante del mentol. Sin embargo, a pesar de años de esfuerzo, los investigadores no habían podido capturar su estructura molecular exacta mientras respondía al frío.

TRPM8 se encuentra normalmente incrustado en la membrana externa de las células nerviosas y tendía a desmoronarse cuando los investigadores lo aislaban. La mayoría de los métodos de imagen también dependen de que las proteínas se bloqueen en una estructura única y estable para visualizarlas, lo que limita la capacidad de los científicos para ver estructuras fluidas e intermedias a medida que una proteína cambia de forma.

Los equipos de Julius y Cheng resolvieron esto al visualizar TRPM8 mientras aún estaba incrustado en membranas tomadas directamente de las células.

«Nos dimos cuenta de que la proteína es particularmente sensible a cómo la manejas. Mantenerla en la membrana nativa fue lo que finalmente nos permitió ver lo que realmente estaba sucediendo», dijo Kevin Choi, estudiante de posgrado de UCSF y coautor principal del estudio.

Mapeando el efecto del frío

Para capturar lo que estaba sucediendo a medida que TRPM8 se abría, el equipo utilizó dos técnicas complementarias: la microscopía crioelectrónica (criomicroscopía), que toma imágenes estáticas, y la espectrometría de masas por intercambio de hidrógeno-deuterio (HDX-MS), que es más dinámica.

Para la criomicroscopía, prepararon muestras de la proteína con frío, con mentol o a temperatura ambiente. Luego, congelaron rápidamente las muestras. Esto bloqueó el canal en su configuración en ese momento. La criomicroscopía luego generó instantáneas tridimensionales de la disposición atómica de la proteína.

Utilizaron HDX-MS para rastrear la proteína en tiempo real a medida que cambiaba la temperatura ambiente. El método destacó qué regiones de la molécula se flexionan y se mueven a medida que cambiaba la temperatura. Juntos, los métodos permitieron a los investigadores modelar exactamente cómo TRPM8 se abría por debajo de los 21 grados Celsius.

«Así como mirar una foto de un caballo no te dice qué tan rápido corre, la microscopía electrónica por sí sola no puede decirnos cómo se mueve la molécula y qué impulsa esos movimientos», dijo la coautora principal Xiaoxuan Lin, científica del HHMI que trabaja en el laboratorio de Cheng en UCSF. «Pero combinar estas dos técnicas nos dio una ventana a lo que estaba sucediendo».

El análisis reveló que el frío estabiliza una región específica del canal TRPM8, lo que luego desencadena el movimiento de una hélice clave. Esto permite que una molécula de lípido separada se deslice en ese lugar, bloqueando el canal abierto y manteniendo la señal de frío. Cuando los investigadores compararon TRPM8 humano con la versión aviar de la proteína, que responde al mentol pero es mucho menos sensible al frío, pudieron detectar qué características son específicamente responsables de detectar el frío.

Una lección para la biología estructural

El nuevo trabajo allana el camino para determinar la estructura de otras proteínas dinámicas que normalmente han sido difíciles de visualizar.

«Las lecciones que aprendimos al estudiar este canal son en realidad muy útiles en general», dijo Cheng. «El comportamiento dinámico es fundamental para la función de muchas proteínas, y no se puede comprender el comportamiento dinámico a partir de una sola instantánea de la estructura de una proteína».

Julius y Cheng ahora están aplicando la misma estrategia para comprender mejor TRPV1, el canal sensor de calor que Julius descubrió en 1997. También planean examinar cómo los compuestos que bloquean TRPM8 (varios de los cuales se encuentran en ensayos clínicos para el dolor) afectan la estructura de la proteína. Eso podría contribuir en última instancia a tratamientos más específicos para afecciones como la alodinia al frío, en la que incluso el frío leve desencadena un dolor intenso.

Fuente:

University of California – San Francisco

Referencia del diario:

Choi, K. Y., et al (2026). Structural energetics of cold sensitivity. Nature. DOI: 10.1038/s41586-026-10276-2. https://www.nature.com/articles/s41586-026-10276-2.

marzo 26, 2026 0 comments
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Tecnología

Plegamiento de Proteínas: Medición del Tiempo de Transición

by Editor de Tecnologia marzo 9, 2026
written by Editor de Tecnologia

It can take less than a microsecond for proteins (artist’s impression) to fold into their 3D shapes.Credit: Christoph Burgstedt/Science Photo Library

Científicos han realizado algunas de las primeras mediciones directas del tiempo que tarda una proteína individual y ordinaria en plegarse. Los resultados sorprendieron: no encontraron relación entre la secuencia o el tamaño de una proteína y el tiempo que tarda en adoptar su forma tridimensional. Además, las proteínas parecen plegarse de manera más eficiente que otras biomoléculas, como el ADN, a pesar de tener componentes más complejos. El trabajo fue publicado hoy en Physical Review Letters1.

‘Dark proteins’ hiding in our cells could hold clues to cancer and other diseases

Las funciones de las proteínas están estrechamente ligadas a sus estructuras tridimensionales, a menudo complejas. Algunas poseen cavidades o protuberancias especializadas que les permiten unirse a receptores celulares para enviar mensajes, por ejemplo. Pero, independientemente de lo intrincado que sea su diseño final, una proteína comienza como una cadena de aminoácidos, “como un largo fideo de espagueti” que puede plegarse de innumerables maneras, explica Hoi Sung Chung, coautor del estudio y biofísico del Instituto Nacional de Diabetes y Enfermedades Digestivas y Renales en Bethesda, Maryland. Las proteínas que se pliegan incorrectamente o de forma incompleta pueden provocar disfunción, enfermedad o toxicidad, por lo que los científicos buscan comprender los detalles del proceso de plegamiento.

Moléculas de proteínas idénticas flotando en un vaso de precipitados alcanzarán su estructura tridimensional final en diferentes momentos, cada una realizando muchos intentos fallidos en el camino. Los científicos saben cuánto tiempo tarda generalmente todo el proceso de plegamiento, incluidos esos intentos fallidos. Pero hasta ahora, ha sido esencialmente imposible medir la duración del acto de plegamiento en sí, esta carrera se llama tiempo de transición.

No parpadees

Este período de transición es muy breve y debe estudiarse en moléculas individuales. Hasta ahora, los científicos han vislumbrado el proceso de plegamiento ralentizándolo artificialmente o observando proteínas inusuales que se pliegan a un ritmo lento.

El grupo de Chung capturó el período de transición directamente mejorando la resolución temporal de un método llamado espectroscopía de fluorescencia de molécula única. Utilizando esta técnica, los científicos pueden evaluar la dinámica de moléculas marcadas con tinte midiendo su fluorescencia.

Los autores unieron una molécula de tinte rojo a un extremo de una cadena de aminoácidos y una verde al otro extremo. El tinte verde brilla por sí solo. El tinte rojo se activa solo cuando recibe energía del tinte verde. Antes de que la cadena de aminoácidos se pliegue, es visible la fluorescencia del tinte verde. Cuando la cadena comienza a plegarse, las dos moléculas de tinte se acercan, lo que permite que la energía se transfiera de la molécula verde a la roja, que luego comienza a brillar. Pero esta luz era demasiado débil para que los científicos la detectaran, por lo que utilizaron un dispositivo de dirección de la luz con patrones de pozos a nanoescala que amplifica la señal de los tintes. Esto les permitió observar el fugaz momento del plegamiento de ocho proteínas.

marzo 9, 2026 0 comments
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Tecnología

Nuevo hallazgo: Clave molecular para controlar el equilibrio de fluidos intestinales

by Editor de Tecnologia enero 10, 2026
written by Editor de Tecnologia

Aunque el estreñimiento y la diarrea puedan parecer problemas opuestos, ambos se basan en el mismo problema subyacente: la cantidad de líquido que se mueve hacia el intestino. Estos problemas comunes afectan a millones de personas en EE. UU. cada año, pero los científicos aún no han comprendido completamente qué regula el equilibrio de líquidos intestinales.

Ahora, en un nuevo estudio de la Universidad de Northwestern, los científicos han descubierto un interruptor molecular clave que ayuda a controlar el “grifo” del agua del intestino.

Al estudiar el bisacodilo – uno de los laxantes más utilizados en el mundo – el equipo de investigación descubrió que un canal iónico, llamado TRPM4, actúa como un interruptor maestro para controlar el flujo de líquidos en el intestino.

Este hallazgo no solo resuelve un misterio médico de larga data, sino que también proporciona un plano para diseñar tratamientos más específicos. Por un lado, los investigadores podrían diseñar fármacos para activar este canal y aumentar el flujo de líquidos para tratar el estreñimiento crónico. Por otro lado, se podrían diseñar nuevos fármacos para inhibir esta vía y controlar la diarrea.

El estudio fue publicado hoy (9 de enero) en la revista Nature Communications.

«Aunque el bisacodilo se ha utilizado clínicamente durante más de 60 años, su objetivo molecular preciso era desconocido», afirmó Juan Du, coautor principal del estudio de Northwestern. «Al combinar biología estructural, electrofisiología, ensayos basados en células y modelos animales, construimos una visión rara y completa de la acción de un fármaco, desde las interacciones a nivel atómico hasta la fisiología de todo el organismo.»

«En conjunto, nuestros hallazgos establecen TRPM4 como un regulador central del equilibrio de líquidos intestinales, identifican un nuevo sitio susceptible a fármacos y proporcionan una hoja de ruta para desarrollar terapias de próxima generación para trastornos gastrointestinales», añadió Wei Lü, de Northwestern, quien codirigió el estudio con Du.

Du y Lü son profesores de ciencias biomoleculares en la Facultad de Artes y Ciencias de Weinberg de Northwestern, profesores de farmacología en la Facultad de Medicina de Northwestern University Feinberg y miembros del Instituto de Química de los Procesos de la Vida de Northwestern. Codirigieron el estudio con el laboratorio de Zhengyu Cao de la Universidad Farmacéutica de China. Jinhong Hu, investigador postdoctoral en los laboratorios de Lü y Du, dirigió los estudios estructurales de este trabajo.

Descubriendo un bolsillo oculto

Una digestión saludable depende de un delicado equilibrio de líquidos en el intestino. En el corazón de este equilibrio se encuentran las células epiteliales, que recubren la pared intestinal y controlan cómo se mueven la sal y el agua dentro y fuera del intestino. Du, Lü, Cao y sus equipos descubrieron que la forma activa del bisacodilo (bisacodilo desacetilado) funciona activando un interruptor molecular dentro de estas células.

Cuando se activa, TRPM4 permite que los iones de sodio se precipiten hacia las células epiteliales intestinales. Este cambio eléctrico desencadena una reacción en cadena: el calcio fluye hacia adentro, activando un canal de cloruro que libera iones de cloruro hacia el intestino y el agua lo sigue naturalmente. Esto resulta en un efecto laxante.

Si bien los científicos han sabido durante mucho tiempo que TRPM4 responde a las señales de calcio dentro de las células, Du, Lü y Cao descubrieron que el bisacodilo activa el canal de una manera completamente diferente que no requiere calcio.

Utilizando microscopía crioelectrónica de alta resolución, el equipo visualizó TRPM4 a nivel atómico e identificó un bolsillo de unión a fármacos previamente desconocido. El metabolito activo del bisacodilo se une a este bolsillo, activando los canales.

«Descubrimos una nueva vía de señalización epitelial que coordina múltiples canales iónicos para regular el movimiento de líquidos intestinales», dijo Du. «Este nuevo eje de señalización proporciona un marco más amplio para comprender cómo los tejidos epiteliales mantienen el equilibrio en la salud, y cómo este equilibrio se altera en la enfermedad.»

Para confirmar que TRPM4 es realmente esencial para controlar los líquidos en el intestino, los investigadores del laboratorio de Cao probaron el bisacodilo en un modelo de ratón modificado genéticamente para carecer del canal TRPM4. En los ratones típicos, el bisacodilo funcionó como se esperaba, aumentando el contenido de agua y ablandando las heces. Pero en los ratones sin TRPM4, el fármaco no tuvo ningún efecto.

Enfoque de larga data en TRPM4

Este descubrimiento se basa en años de trabajo de los laboratorios de Lü y Du para comprender la función de TRPM4 a nivel molecular. En 2017, los equipos publicaron las primeras estructuras de TRPM4 a resolución atómica en Nature, revelando cómo se ensambla el canal y cómo las moléculas pequeñas pueden modular su actividad.

Más recientemente, en 2024, los laboratorios demostraron que el estudio de TRPM4 a temperatura fisiológica revela una conformación “cálida” previamente no vista que es esencial para la apertura del canal y la función normal. Estos estudios, publicados en Nature, demostraron que la temperatura remodela profundamente la estructura, la unión a fármacos y la apertura de TRPM4, proporcionando un contexto crítico para comprender cómo funciona TRPM4 en los sistemas vivos.

El trabajo estructural en este estudio, «Señalización TRPM4 no canónica independiente del calcio gobierna la homeostasis de líquidos intestinales», fue apoyado por la financiación inicial de Northwestern, un premio McKnight Scholar, un premio Klingenstein-Simon Scholar, una beca Sloan Research y un premio Pew Scholar en las Ciencias Biomédicas. Los investigadores también recibieron apoyo de la Instalación de Biología Estructural (SBF) para la recopilación de datos de criomicroscopía electrónica y apoyo computacional de Northwestern IT Research Computing and Data Services.

Fuente:

Referencia del diario:

DOI: 10.1038/s41467-025-68014-7

enero 10, 2026 0 comments
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